Este microscopio confocal permite detectar fluorescencia en dos y tres canales simultáneamente visualizando también la luz transmitida con óptica DIC; permite realizar series en el plano Z para reconstrucciones 3D; captura de una secuencia en el tiempo para experimentos in vivo. Utiliza un microscopio invertido OLYMPUS IX81 con los siguientes objetivos:

10x   NA 0.30 uplan FL N
20x   NA 0.50 uplan FL N
40x   NA 1.30 uplan FL N oil
60x   NA 1.35 uplan Sapo oil
100x NA 1.40 uplan Sapo oil

Las unidades laser que posee son los siguientes: 

Láser Gaseoso Multi Argón de 40 mW (458/488/515nm)
Láser Verde Helio Neón 543nm
Láser Rojo Helio Neón 633nm
Láser de estado sólido 440nm

El software Fluoview v 5.0 permite manejar fácilmente las diferentes capturas que se pueden realizar con este equipo.

Microscopio Sistema Olympus LSM Fluoview 1000, microscopio Olympus IX81 (invertido)
Objetivos 10x NA 0.30 uplan FL N
20x NA 0.50 uplan FL N
40x NA 1.30 uplan FL N oil
60x NA 1.35 uplanSapo oil 
100x NA 1.4 uplan Sapo oil
Detección PMT
Software Fluoview v 5.0
Otros rueda de filtros motorizada, rueda de objetivos motorizada en el plano Z
Deteccion de fluorescencia: Fuente de luz Láser Gaseoso Multi Argón de 40 mW (458/488/515nm)
Láser Gaseoso Verde Helio Neón 543nm
Láser Gaseoso Rojo Helio Neón 633nm 
Láser de estado sólido 440nm
Filtro Exitación DM 488/546/633
BS 20/80
DM 405/488
DM 405-440/515
DM 405-440
Filtro Emisión Canal 1: BA 465-495
BA 505-525
BA 480-495
Filtro Emisión Canal 2: BA 505 IF
BA 560-620
BA 535-565
BA 520-550
Filtro Emisión Canal 3: BA 650 IF
BA 560 IF
  • Observación de muestras teñidas con fluoróforos de longitud de onda definidos.

  • Observación de muestras teñidas con tinciones vitales fluorescentes (lysotracker, mitotracker, etc…)


  • Posibilidad de realizar cortes ópticos y de esta forma tener una serie de imágenes en el eje Z de la muestra, con posibilidades de realizar reconstrucciones 3D


  • Captura de 3 fluoróforos simultáneos


  • FRET (Fluorescence Resonance Energy Transfer) en células fijadas

  • Captura de imágenes DIC

  • Captura de imágenes con luz Polarizada

Microscopio Confocal Olympus Fluoview LSM 1000

Neurona de cultivo primario de neuronas hipocampales de embriones de rata de 3 días (DIV3). Los marcadores utilizados son: en verde BIII Tubulina, en rojo FZD5 (receptor de la vía WNT) y en azul Phalloidina. Magnificacion 400X.

Autor: Paula Slater. Alumna de doctorado, Laboratorio de Biología Celular y Molecular de la Adicción.
Microscopio Confocal Olympus Fluoview LSM 1000

Neurona gabaérgica de cultivo primario de neuronas hipocampales de embriones de rata de 18 días (DIV21). Los marcadores utilizados son: en verde GAD65 (enzima encargada de la síntesis de GABA), y en rojo sinapsina (proteína presináptica)

Autor: Paula Slater PhD (c), Laboratorio de Biología Celular y molecular de la adicción, FCB PUC.
Microscopio Confocal Olympus Fluoview LSM 1000

Técnica: Confocal. Muestra: Cultivo primario de astrocitos de ratón en inmunofluorescencia indirecta. En la imagen se muestran astrocitos GFAP positivos en rojo (GFAP-555), la presencia de hemicanales de conexina 43, en verde (Cx43 conjugado con Alexa 488). Barra de escala = 20um. Magnificación 60x.

Autor: Fernanda Gárate, UMA-BIO
Microscopio Confocal Olympus Fluoview LSM 1000

Ganglio de la raíz dorsal de ratón. En verde YFP, en rojo GAP43 (Growth associated factor 43) y en azul neurofilamentos.

Autor: Dominique Lemaitre, Millenium Nucleus for Regenerative Biology, Pontificia Universidad Católica de Chile.